10 种植物精油对腐生葡萄球菌抑制效果比较及肉桂精油抑菌机制分析.docx

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1、特定腐败菌(SSO)是海产品中的一类重要微生物,具有调节鱼体代谢产生一系列化合物与生物活性物质的能力。SSO还可能通过其初级或次级代谢,产生具有异味的挥发性有机化合物,直接影响鱼肉的感官特性、质地与新鲜度。因此,其作为评价化学腐败指数的重要部分,在货架期预测中起到关键作用。在对10种植物精油对腐生葡萄球菌作用性能分析的基础上,筛选出效果最佳的植物精油肉桂精油;以其为研究对象,通过分析其对腐生葡萄球菌的微生物生长曲线、碱性磷酸酶(AKP)活力、紫外吸收物质与扫描电子显微镜等综合评价,并结合其对菌体生物膜的抑制率分析,研究肉桂精油对腐生葡萄球菌的作用机制与生物被膜形成的影响,以期为植物精油等植物源

2、生物保鲜剂在水产品保鲜中的应用提供理论参考。1、10种植物精油处理对腐生葡萄球菌的最小抑菌浓度(MIC)与最小杀菌浓度(MBC)不同植物精油在抑菌活性上表现出较大差异,在10种受试植物精油中,以肉桂精油的作用效果最佳,其对腐生葡萄球菌的抑菌圈直径为(24.102.55)mm,MlC和MBC均为1mgmLo姜精油与甜茴香精油的抑菌性较弱,可能由于其中活性物质易挥发,使部分有效成分在培养基表面重新分配。植物精油大多含有酚类物质,如百里香酚、丁香酚与香芹酚等,并以此发挥抗菌作用。在肉桂精油中,肉桂醛为发挥其抑菌作用的主要成分。由MIC结果可知,肉桂精油在10种精油中的抑菌性最强,因此后期将以DMSO

3、为对照组,1/2MIC、MIC、2MIC肉桂精油为处理组,进一步研究肉桂精油对腐生葡萄球菌的作用效果。2、肉桂精油处理对腐生葡萄球菌生长曲线的影响CK组菌体生长正常,随着时间延长,其菌落总数呈上升趋势,而不同质量浓度肉桂精油处理组作用效果明显,在2h内菌体数明显降低。其中,1/2MIC肉桂精油组菌体生长在14h时被完全抑制;MIC肉桂精油组与2MIC肉桂精油组在5h时被完全抑制,未有活菌检出。结果表明,肉桂精油对抑制腐生葡萄球菌生长有明显效果。3、肉桂精油处理对腐生葡萄球菌细胞膜完整性的影响随着处理时间的延长,不同质量浓度处理组在260nm和280nm波长处的吸光度总体呈上升趋势,表明肉桂精油

4、对腐生葡萄球菌的作用效果具有一定的时间依赖性。其中,MlC组与2MIC肉桂精油处理组的吸光度相比于CK组上升迅速;其均在0.5h时升高,处理Ih后,吸光度达到最大,2MIC处理组的吸光度上升速度明显快于MIC处理组,由此表明肉桂精油对腐生葡萄球菌的细胞膜完整性有较强破坏性,其能使菌体胞内物质大量渗出,作用强度与质量浓度正相关。4、肉桂精油处理对腐生葡萄球菌胞外AKP活力的影响经过不同质量浓度的肉桂精油处理5h后,CK组AKP活力无显著变化,各处理组的AKP活力均有所上升,AKP活力与肉桂精油质量浓度呈正相关,其中2MIC肉桂精油组增长最为明显,在培养5h时达6.52UmLo表明肉桂精油对腐生葡

5、萄球菌的细胞壁有破坏作用,同时还可能使细胞膜遭到破坏,胞内重要生理物质泄漏,最终导致细菌死亡。5、肉桂精油处理对腐生葡萄球菌微观结构的影响在CK组中,菌体保持原有完整的球状结构,菌体表面致密、光滑而饱满;而经不同质量浓度的肉桂精油处理后,菌体表面出现明显皱缩,部分菌体表面不再致密,出现溶解与黏聚现象。同时,经MIC与2MIC肉桂精油处理后,部分菌体已破裂并有内容物流出,表明肉桂精油对腐生葡萄球菌的菌体细胞壁与细胞膜结构破坏作用明显,使细胞膜受到不同程度的损伤,胞内物质泄漏,最终导致菌体死亡。6、肉桂精油处理对腐生葡萄球菌生物膜形成的影响不同质量浓度的肉桂精油对腐生葡萄球菌生物膜的生长有明显抑制

6、作用,表明其对腐生葡萄球菌生物膜具有良好的清除效果,且抑制效果随着肉桂精油质量浓度的升高而增强。生物膜的形成机制较复杂,通常认为受到胞间通讯系统在不同菌种间差异的影响,其常见的信号调节分子有脂肪酰基高丝氨酸内酯(AHLs)、自诱导肽(AIP)与自诱导分子-2(AI-2)等。讨论通过比较10种植物精油对腐生葡萄球菌的抗菌作用,并以抗菌作用最明显的肉桂精油为研究对象,初步探究其对腐生葡萄球菌的作用机制。结果表明,肉桂精油对腐生葡萄球菌的MIC与MBC均为1mg/mL;经肉桂精油处理后,腐生葡萄球菌生长明显延缓,细胞膜通透性增加,其菌体完整性受到破坏,并对其生物膜的生成有明显的抑制作用。附参考资料植

7、物精油抗细菌的作用机制根据精油的化学特性、渗透性和细菌细胞膜的破坏,抗菌作用模式导致细菌感染控制过程中离子稳态和电子传递链等关键功能的丧失(IJo此外,精油通过抑制细菌的蛋白质合成来阻止细菌细胞分裂。基于现有的研究报告,抑制机制可概括为“细菌细胞壁膜裂解、抗性质粒丧失和群体感应丧失”(如下图所示)。茶树精油作为膜渗透剂,导致细菌失去化学渗透控制【2-3】。精油的酚/单菇成分的极性使其很容易与细菌细胞壁成分发生作用,具有穿透细菌细胞壁的天然渗透性4o精油的疏水性可以破坏细菌的细胞膜5-7L此外,百里香酚、香芹酚和丁香酚等酚类化合物可以分解饱和脂肪酸,阻碍细菌细胞分裂【8-9。在对大肠杆菌和金黄色

8、葡萄球菌的抑制过程中,牛至精油和肉桂精油被发现在胞质周围形成大而不规则的空隙以及胞质内修饰6L同样,在较低剂量下,月桂烯也会破坏金黄色葡萄球菌的细胞膜,细胞质成分聚集使细胞壁更致密10-1Ilo细菌细胞分裂的关键蛋白是细胞质FtsZ(丝状温度敏感突变体Z),FtsZ是细菌细胞分裂所必需的。通常,FtSZ通过在细胞分裂位点形成Z形环来调节细菌细胞分裂过程。肉桂醛能够减少大肠杆菌中FtsZ的组装、GTP(三磷酸鸟甘)依赖性聚合和GTP水解【12。精油还能够破坏细菌细胞膜,改变细胞内生化网络,降低细胞ATP浓度I3-15L细菌的质子动力在K+和H+离子之间的平衡中起着至关重要的作用,丁香酚、肉桂醛和

9、香芹酚在5至30M的浓度范围内影响这一平衡从而抑制葡萄糖释放ATP,导致细菌细胞死亡116】。作为细菌群落内复杂信号网络的一部分,群体感应(QUOnImsensing,QS)导致生物膜的形成,以抵抗抗生素【17】。丁香、天竺葵、薰衣草、玫瑰和迷迭香精油能抑制含有假单胞菌、李斯特菌、沙门氏菌、金黄色葡萄球菌和乳杆菌的生物膜【18-19。肉桂醛及其衍生物在浓度为60-100UM时,可降低哈威弧菌BB886、鳗弧菌和创伤弧菌的毒力因子LuxR的DNA结合能力20-22】。单菇烯作为最丰富的精油成分之一,抗菌作用靶标包括膜嵌入蛋白、膜流动渗透性和离子转运过程【23】。1 ENazzaro,EFrati

10、anni,L.DeMartino,R.Coppola,V.DeFeo,Effectofessentialoilsonpathogenicbacteria,Pharmaceuticals6(2013)1451-1474.2 S.Burt,Essentialoils:theirantibacterialpropertiesandpotentialapplicationsinfoods-areview,Int.J.Food.Microbiol.94(2004)223-253.3 R.Hamoud,ESporer,J.Reichling,M.Wink,Antimicrobialactivityofat

11、raditionallyusedcomplexessentialoildistillate(Olbas(R)Tropfen)incomparisontoitsindividualessentialoilingredients,Phytomedicine19(2012)969-976.4 S.Hemaiswarya,M.Doble,SynergisticinteractionofeugenolwithantibioticsagainstGramnegativebacteria,Phytomedicine16(2009)997-1005.5 A.O.Gill,R.A.Holley,Disrupti

12、onofEscherichiacoli,ListeriamonocytogenesandLactobacillussakeicellularmembranesbyplantoilaromatics,Int.J.Food.Microbiol108(2006)1-9.6 R.Becerril,R.Gomez-Lus,P.Goni,P.Lo,pez,Combinationofanalyticalandmicrobiologicaltechniquestostudytheantimicrobialactivityofanewactivefoodpackagingcontainingcinnamonor

13、oreganoagainstE.coliandS.aureus,Analytic.Bioanalytical.Chem.388(2007)1003-1011.7 V.N.Lima,C.D.Oliveira-Tintino,E.S.Santos,L.P.Morais,S.R.Tintino,T.S.Freitas,etal.,Antimicrobialandenhancementoftheantibioticactivitybyphenoliccompounds:Gallicacid,caffeicacidandpyrogallol,Microb.Pathogen.99(2016)56-61.8

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15、omessentialoils,J.Agric.Food.Chem.55(2007)4863T870.10 I.Rasooli,M.B.Rezaei,A.Allameli,UltrastructuralstudiesonantimicrobialefficacyofthymeessentialoilsonListeriamonocytogenes,Int.J.Infect.Dis.10(2006)236-241.11 E.Guinoiseau,A.Luciani,PGRossi,Y.Quilichini,S.Ternengo,P.Bradesi,L.Berti,Cellulareffectsi

16、nducedbyInulagraveolensandSantolinaCorsicaessentialoilsonStaphylococcusaureus,Eu.J.Clinic.Microbiol.Infect.Dis.29(2010)873-879.12 P.Domadia,S.Swarup,A.Bhunia,J.Sivaraman,D.Dasgupta,InhibitionofbacterialcelldivisionproteinFtsZbyCinnamaldehyde,Biochem.Pharmacol.74(2007)831-840.13 S.E.Walsh,J.Y.Maillard,A.D.Russell,C.E.Catrenich,D.L.Charbonneau,R.G.Bartolo,Activityandmec

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