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1、肿瘤模型构建小鼠模型分三大类第一类是以S180、EACH22等为代表的,他们的宿主小鼠多选用KM,可产生腹水,也可在皮下成瘤。多以腹水传代,试验时抽取腹水,经过肯定稀释后皮下接种构建模型,接种后其次天开头给药(这里与指导原则相悖,指导原则要求肿瘤长至100-300立方毫米时才给药),给药7到10天,接种10天后结束试验,剥取肿瘤称瘤重。1 .构建瘤种可以用体外细胞株培育后,用PBS悬浮至l3xl()6o.imlmouse,i.p接种即可,最好用6号左右的针头,就是常用的2ml一次性注射的针头。细胞悬液接种时要选活力好的细胞,就是对数期。细胞生长至瓶底7080%满的时候认为是对数生长期。2 .腹
2、水传代观看到第一代的种鼠肚子较大后(一般约89天左右),可以传代,传代时取ImI注射器,用2ml注射器的针头,种鼠腹部消毒后直接将针头插入抽取腹水即可,留意不要把针头插得很深,尽量浅一点,还可以把老鼠拎起来,采用重力,让腹水集中在某处便于抽取,一般抽个0.5ml就可以了,不用离心,直接用PBS36倍稀释后,接种到新的老鼠腹腔,腹水颜色为白色或者略有发黄都是正常的,但是血性腹水说明不好,需要留意调整。其次代以后,尽量67天的时候传代,不要等的时间太久,否则腹水简单血性。三代后可用于试验。腹水瘤接种时,接种量不要太高,1*107n,o.2ml即可,多按1:3用生理盐水稀释,否则有可能腹水血性。超过
3、7天的腹水再传代,动物的周龄太大(6周),传代次数太多也很简单消失血性腹水,一般小鼠肿瘤模型都掌握在30多代以内(也有说50多代的)。消失血性以后可以调整一下:血性腹水可以离心后加0.17N的NH4CL溶液破红细胞,然后精确掌握条件(接种量,传代时间,动物周龄等)传几代,许多状况下再传一两代后会有无腹水血性的种鼠消失,然后用这只种鼠的腹水连续传代。腹水难抽有几种状况,要么接种天数不够,腹水不够多,一般要等动物肚子很大了才去抽。要么就是压力的问题。有的动物腹水很稠。这时可撕开小鼠肚子,拿掉针头,直接抽洁净,最多的时候可抽到5ml。3 .接种这个时候抽取的腹水需要量比较多,有时需要处死种鼠后,当心
4、地用消毒眼科剪刀镜子剥开腹部皮肤,留意不要弄破肌肉,然后,用银子(最好是哪种前面有倒勾的镜子,学名似乎是唇型锻)拎起腹部的肌肉,用剪刀剪开一个小口,然后用玻璃滴管或者去掉针头的注射器吸取腹水。然后进过肯定的稀释后,接种到小鼠的腋下。关于稀释量,各个试验室的状况都不一样,最好摸索一下,开头的时候可以适当的计数,但是要用台盼兰染色后计活细胞数(计数的时候要留意,有一些很细小的细胞是血细胞,不要计数)。假如接种细胞量偏大会造成肿瘤早期就溃烂,所以不要为了追求肿瘤生长速度而一味的提高接种细胞量。接种部位在小鼠腋下,但是不要深化到腋窝里面,会给以后的操作带来麻烦。可以往尾部或背部靠一些,不要往腹部靠,简
5、单使肿瘤被垫料磨烂。接种部位可以选择腋下或者后肢,有的文章说是背部接种,但是背部血管不发达,养分不够,一般不建议采纳.接种时的进针处离接种处远一点,让针头在皮下多走一段,不简单污染。有的人接种的时候喜爱针头向上用力,紧贴着表皮往里走,然后注射的时候感觉阻力较大,打出来的皮丘又紧又圆,这样的接种,会使肿瘤与皮肤严峻粘连,不利于最终肿瘤的剥取。也不要紧靠肌肉,肿瘤会与肌肉严峻粘连。应当在两者之间,接种的时候要精确掌握接种在皮下,进针深度1.5Cm左右,针头沿皮肤水平进入,然后挑起表皮,注射。进针的感觉轻松自如,针头很自由,虽然打出来的肿瘤不会很圆很美丽,但是相对好剥取一些。防止接种的时候老鼠乱动,
6、正确手法是用拇指和食指捏住老鼠的颈部皮肤,无名指和手掌下部把老鼠的后肢捏住,捏颈部的时候手指尽量多捏一点皮肤,然后右手(你是左手抓动物的话)拉住后肢,尽量往下拉,让老鼠的身体伸绽开来,在用无名指固定,中指可以放在老鼠的身体下面,适当的往上顶,使老鼠的腋下一代完全平展,皮肤不用绷得太紧,平展就可以了,此外接种的时候进针点很靠下,针头在皮下走一段再注射,速度不要太快。注射前针头略微动一动,能动就说明在皮下,否则可能在皮内或者肌肉内。一般来说都是有鼓包的但是要是你接种位置太深化腋窝,你是看不到鼓包的。主要靠针头略微动一动来推断。4 .观测指标主要是按时称体重,试验结束后剥取肿瘤称瘤重。由于出瘤已经是
7、接种后的第6天左右了,第10天就结束时间,瘤体积的数据意义就不大。小鼠肿瘤很难剥,只能急躁,没有太好的方法,剥多了以后,手上会把握一些巧力,有一些关心,但是我们还是很头痛小鼠肿瘤试验结束。肿瘤组织四周常常会有一些血窦的形成,弄破后会有血和黄色的液体流出,正常的,但是剥瘤子的时候不要把它弄破,会严峻影响瘤重。依据SFDA的规定,平均瘤重小于1g,或者单个瘤重小于200mg,认为肿瘤生长不良,试验作废。其次类是以IeWiS肺癌、B16为代表的,他们的宿主多为C57。不产生腹水,只能皮下生长。多用插块法或者匀浆法传代和接种。有一种做法也是接种后其次天开头给药,还有一种做法是接种三天后给药,接种后两周
8、结束试验,剥取肿瘤称重。1 .瘤种构建体外细胞株,培育后PBS悬浮至l3xl()60.ml/site,接种至小鼠腋下,即可。2 .传代与接种体内瘤源用于传代接种,有两种手段(均为无菌操作),套管针插块法对瘤组织损伤小,可能100%成瘤。匀浆法对瘤组织损伤大,成瘤可能小于100%。(1)插块法:种鼠处死后体表消毒,将肿瘤组织剥离下来后,置于在PBS或0.9%无菌氯化钠注射液中洗涤洁净,然后剪开,去处中心颜色变暗坏死部分,以及外表的包膜(假如比较明显的话),选外围发亮部分。清洗洁净,然后换到洁净的PBS中,用剪刀剪成Imm直径左右的小块,最终用镜子将小块从针头处塞进1820号的接种套管针(最好用的
9、是胸膜活检针20号,但是现在已经买不到了,可以用硬脊膜外穿刺针18号磨平针头后代替),在老鼠的皮肤上剪一小口,接种于动物腋下或者其他部位。塞的组织块的量以接种针头的口径为准,不能太紧也不能太松,以孔径为标尺,尽量保持差不多大小的接种量。如消失出针挂组织的问题,关键在于针头的磨制,在针后部的小突起于小缺口吻合后,实体针弯曲方向应当与套管针磨制的斜面全都,接种时,实体针要推究竟,也就是后面的小突起与小缺口契合,然后针头“舔住”肌肉层转一圈再退针,还有就是瘤块肯定要完全塞入针头内,外面不能有漏出来的。(2)匀浆法:种鼠处死后体表消毒,将肿瘤组织剥离下来后,置于PBS等体系中(以下均以PBS为例),用
10、剪刀剪开,剔出中心的坏死部分,以及外表的包膜(假如比较明显的话),清洗洁净,然后换到洁净的PBS中,用剪刀剪成Imm直径左右的小块,然后用玻璃匀浆器匀浆,留意上下次数不行超过5次,匀浆时可以适当的旋转,200目筛网过滤,然后取滤液用台盼兰活细胞计数,依据计数结果进行稀释,最终将组织悬液用注射器接种。最终的稀释最,需要依据你瘤株状况确定的接种量而定,这个接种量经过一段时间的稳定后,可以依据阅历(匀浆液的浓度、粘度、肿瘤组织大小等状况)直接进行稀释,不需要计数,但是在早期,还是建议进行计数后再稀释。此外各种瘤株的状况不一样,不光是接种量不同,同样大小的瘤源匀浆后的活细胞数也会不同。比如NCI-H4
11、60匀浆后的活细胞数就比较多,而A431几乎没有活细胞。此外,假如一个瘤源不够,可以取多个瘤源进行接种,一般来说,插块法,一个瘤源接种30只动物是没有问题的,匀浆法一般2只也可以接种30只了,为保险起见可以多预备一只瘤源。留意考虑可能需要剔出不合格瘤源的状况。最好不用带血清的培育液代替PBS,由于血清是异种蛋白,虽然裸鼠T细胞缺陷,但是B细胞和NK细胞完整,含血清的物质会引起裸鼠的免疫反应,连带着接种的瘤组织也会被影响,降低成瘤率和生长速度。从成瘤效果来说,无血清培育基PBSsaline,肿瘤模型体内传代的标准是,肿瘤体积大于50Omm3以上就可以了,最好小于1000mm3,接种的动物数应当大于实际试验所需动物数,出瘤后要分组给药的时候淘汰掉未长出的、太大以及太小的肿瘤。然后再依据肿瘤体积随机分组。3 .关于观测指标可以在出瘤后测量瘤体积,但是主要还是考察瘤重。第三类是以P388、L1210为代表的白血病模型。宿主为DBA2,也有人用C57与DBA2的FI代传代,DBA2用于试验,但实际两种宿主传代并没有什么区分。它们能形成腹水,一般不用于皮下接种试验,平常多用腹水传代,试验时多用腹腔接种或尾静脉接种考察生存时间。也是接种后其次天开头给药腹水都是血性的。此外,腹水量也不多,有的时候可以先注射一到两亳升的PBS后,再抽取。